Слау онлайн матричным методом: Онлайн калькулятор. Решение систем линейных уравнений. Матричный метод. Метод обратной матрицы.

alexxlab / / Разное

Содержание

🎓 Решение СЛАУ матричным методом — презентация на Slide-Share.ru

1

Первый слайд презентации: Решение СЛАУ матричным методом

Изображение слайда

2

Слайд 2: Матричный метод решения СЛАУ

Матричный метод – это метод решения через обратную матрицу  квадратных (с числом уравнений, равным числу неизвестных) систем линейных алгебраических уравнений с ненулевым определителем.

Изображение слайда

3

Слайд 3: Пусть дана система линейных уравнений с  n  неизвестными

Запишем ее в матричной форме: A  — основная матрица системы, состоящая из коэффициентов при неизвестных.

B  — вектор — столбец свободных членов (слагаемых) X — вектор – столбец решений системы

Изображение слайда

4

Слайд 4: Запишем СЛАУ в виде матричного уравнения и решим его

AX  =  B Умножим это матричное уравнение слева на  A   − 1  — матрицу, обратную матрице  A : Так как  A   − 1 A  =  E по определению обратной матрицы, получаем E X   = A   − 1 B X   = A   − 1 B где A   – 1 =1/∆ ( A * ) Т, ∆ ≠ 0 ( A * ) Т — транспонированная матрица алгебраических дополнений соответствующих элементов матрицы  A.

Изображение слайда

5

Слайд 5: Пример Решить СЛАУ матричным методом:

Сначала убедимся в том, что   определитель матрицы   из коэффициентов при неизвестных   СЛАУ   не равен нулю.

Изображение слайда

6

Слайд 6: Вычислим алгебраические дополнения для элементов основной матрицы

Изображение слайда

7

Слайд 7: Найдём союзную матрицу, транспонируем её и подставим в формулу для нахождения обратной матрицы

Изображение слайда

8

Слайд 8: Найдем неизвестные, перемножив обратную матрицу и столбец свободных членов

Ответ: x=2; y=1; z=4.

Изображение слайда

9

Слайд 9: Отдохнем на песочке…

Изображение слайда

10

Слайд 10

Вернемся в реальность

Изображение слайда

11

Слайд 11: Самостоятельная работа

1 вариант Решить СЛАУ: 2 вариант Решить СЛАУ:

Изображение слайда

12

Последний слайд презентации: Решение СЛАУ матричным методом: Домашнее задание

Решить СЛАУ:

Изображение слайда

Деградация макромолекул-мишеней MSCRAMM в отторжении VLU под действием химотрипсина 1 (ISP) Lucilia sericata сохраняется в присутствии тканевой желатиназной активности

1. Поснетт Дж., Фрэнкс П.Дж. Бремя хронических ран в Великобритании. Нурс Таймс 2008; 104:44–5. [PubMed] [Google Scholar]

2. Льюис Р., Уайтинг П., Тер Риет Г., О’Мира С., Гланвилл А. Быстрый и систематический обзор клинической эффективности и экономической эффективности средств для обработки ран при лечении хирургических ран, заживающих вторичным натяжением. Оценка технологий здравоохранения 2008; 5:1–131. [PubMed] [Академия Google]

3. Рамундо Дж., Грей М. Ферментативная обработка раны. J Wound Ostomy Continence Nursing 2008; 35: 273–80. [PubMed] [Google Scholar]

4. Стид ДЛ. Разбор. Ам Джей Сург 2004; 187:71S–4. [PubMed] [Google Scholar]

5. Воуден К., Воуден П. Дебридмент стал проще. Раны Великобритания 2011;7:1–4. [Google Scholar]

6. Milne CT, Ciccarelli AO, Lassy M. Сравнение коллагеназы с гидрогелевыми повязками при обработке ран. Раны 2010;22:270–4. [PubMed] [Академия Google]

7. Сингер А.Дж., Тайра Б.Р., Андерсон Р., Район Б.А., Макклейн С. А., Розенберг Л. Реэпителизация среднедермальных ожогов свиней после быстрой ферментативной обработки с помощью Debrase ® . J Burn Care Res 2011; 32: 647–53. [PubMed] [Google Scholar]

8. Дамвилл Дж. К., Уорти Г., Бланд Дж. М., Каллум Н., Доусон С., Иглесиас С., Митчелл Дж. Л., Нельсон Э. А., Соарес М. О., Торгерсон Д. Д. Личиночная терапия язв на ногах (VenUS II): рандомизированное контролируемое исследование. БМЖ 2009; 338:1047–54. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

9. Телфорд Г., Браун А.П., Сибра Р.А.М., Хоробин А.Дж., Рич А., Инглиш АО, Притчард Д.И. Разрушение струпа от венозных язв на ногах с использованием рекомбинантного химотрипсина из

Lucilia sericata . Бр Дж Дерматол 2010;163:523–31. [PubMed] [Google Scholar]

10. Харрисон-Балестра С., Каззанига А.Л., Дэвис С.К., Мерц П.М. Выделенная рана Pseudomonas aeruginosa образует биопленку in vitro в течение 10 часов и визуализируется при световой микроскопии. Дерматол Сург 2003; 29: 631–5. [PubMed] [Академия Google]

11. ван дер Плас М.Дж.А., Юкема Г.Н., Вай С.В., Догтером-Баллеринг Х.К.М., Лагендейк Э.Л., ван Гулпен С., ван Диссель Дж.Т., Блумберг Г.В., Нибберинг Р.Х. Выделения/выделения личинок по-разному эффективны против биопленок Staphylococcus aureus и Pseudomonas aeruginosa . . J Антимикробный химиопрепарат 2008; 61: 117–22. [PubMed] [Google Scholar]

12. Холл-Студли Л., Стоодли П. Развитие концепций биопленочных инфекций. Клеточная микробиология 2009; 11:1034–43. [PubMed] [Академия Google]

13. Rebiere-Huët J, Di Martino P, Hulen C. Ингибирование адгезии Pseudomonas aeruginosa к фибронектину с помощью PA-IL и моносахаридов: участие лектиноподобного процесса. Can J Microbiol 2004;50:303–12. [PubMed] [Google Scholar]

14. Хендерсон Б., Наир С., Паллас Дж., Уильямс М.А. Фибронектин: многодоменный адгезин хозяина, на который нацелены бактериальные белки, связывающие фибронектин. FEMS Microbiol Rev. 2011; 35: 147–200. [PubMed] [Google Scholar]

15. Брэдфорд М. Быстрый и чувствительный метод количественного определения количества белка в микрограммах с использованием принципа связывания белкового красителя. Анальная биохимия 1976;72:248–54. [PubMed] [Google Scholar]

16. Schagger H, Von Jagow G. Электрофорез в полиакриламидном геле с додецилсульфатом трицина натрия для разделения белков в диапазоне от 1 кДа до 100 кДа. Анальная биохимия 1987; 166: 368–79. [PubMed] [Google Scholar]

17. Блюм Х., Бейер Х., Гросс Х.Дж. Улучшенное окрашивание серебром растительных белков, РНК и ДНК в полиакриламидных гелях. Электрофорез 1987; 8: 93–99. [Google Scholar]

18. Таубин Х., Стэхелин Т., Гордон Дж. Электрофоретический перенос белков из полиакриламидных гелей на листы нитроцеллюлозы: процедура и некоторые приложения. Proc Nat Acad Sci USA 1979;76:4350–4. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

19. Притчард Д.И., Телфорд Г., Диаб М., Лоу В. Экспрессия совместимого с цГМФ Lucilia sericata фермента сериновой протеиназы насекомых. Биотехнология Прог 2012; 28: 567–72. [PubMed] [Google Scholar]

20. Рой С., Сан А., Редман С. Сборка цепей компонентов фибриногена in vitro требует факторов эндоплазматического ретикулума. J Биол Хим 1996; 271:24544–50. [PubMed] [Google Scholar]

21. Руослахти Э., Пиршбахер М., Энгвалл Э., Олдберг О., Хейман Э.Г. Молекулярно-биологические взаимодействия фибронектина. Джей Инвест Дерматол 1982;79(S1):658–88. [PubMed] [Google Scholar]

22. Куинлан Г.Дж., Мартин Г.С., Эванс Т.В. Альбумин: биохимические свойства и терапевтический потенциал. гепатология 2005;41:1211–9. [PubMed] [Google Scholar]

23. Тот М., Чвыркова И., Бернардо М.М., Эрнандес-Баррантес С., Фридман Р. Активация Pro-MMP-9 по оси MT1-MMP/MMP-2 и MMP-3: роль TIMP-2 и плазматических мембран. Biochem Biophys Res Commun 2003; 308: 386–95. [PubMed] [Google Scholar]

24. Телфорд Г., Браун А.П., Рич А., Инглиш Дж.С., Причард Д.И. Раневой потенциал гликозидаз ранозаживляющего личинки, Люцилия сериката .

Мед Вет Энтомол 2012; 26: 291–9. [PubMed] [Google Scholar]

25. Харрис Л.Г., Нигам И., Сойер Дж., Мак Д., Притчард Д.И. Lucilia sericata химотрипсин разрушает опосредованное белком образование стафилококковой биопленки. Приложение Environment Microbiol 2013;79:1393–5. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

26. Уолкотт Р.Д., Кеннеди Дж.П., Дауд С.Е. Регулярная обработка ран является основным средством поддержания здорового раневого ложа в большинстве хронических ран. J Уход за раной 2011;18:54–56. [PubMed] [Академия Google]

27. Олсон М.В., Бернардо М.М., Пиетила М., Герваси Д.К., Тот М., Котра Л.П., Массова И., Мобашери С., Фридман Р. Характеристика мономерных и димерных форм латентной и активной матриксной металлопротеиназы-9. Дифференциальные скорости активации стромелизином 1 J Биол Хим 1999; 275:2661–8. [PubMed] [Google Scholar]

28. Нагасе Х., Виссе Р., Мерфи Г. Структура и функция матриксных металлопротеиназ и ТИМП. Кардиваск Рез 2006; 69: 562–73.

[PubMed] [Академия Google]

29. Кридель С.Дж., Чен Э., Котра Л.П. Гидролиз субстрата матриксной металлопротеиназой 9. J Biol Chem 2001; 276:20572–8. [PubMed] [Google Scholar]

30. Schmidtchen A, Wolff H, Rydengard V, Hansson C. Обнаружение сериновых протеаз, секретируемых Lucilia sericata in vitro и во время лечения хронической язвы ноги. Акта Дерм Венереол 2003; 83: 310–1. [PubMed] [Google Scholar]

31. Фазано Ф., Карри С., Террено Э., Гальяно М., Фанали Г., Нарцисо П., Нотари С., Асенци П. Необычайные лигандсвязывающие свойства сывороточного альбумина человека. МЮБМБ Жизнь 2005; 57: 787–9.6. [PubMed] [Google Scholar]

32. Телфорд Г., Браун А.П., Рич А., Инглиш АО, Притчард Д.И. Химотрипсин I личинки Lucilia sericata устойчив к эндогенным ингибиторам раневой протеазы. Бр Дж Дерматол 2011; 164:192–6. [PubMed] [Google Scholar]

33. Таунсенд Р.Р., Хилликер Э., Ли Ю.Т., Лейн Р.А., Белл В.Р., Ли Ю.К. Углеводная структура фибриногена человека. J Биол Хим 1982; 257:9704–10. [PubMed] [Google Scholar]

34. Chen C-P, Song S-C, Gilboa-Garber N, Chang KSS, Wu AM. Исследования сайта связывания галактозоспецифического агглютинина PA-IL из Синегнойная палочка . гликобиология 1998; 8: 7–16. [PubMed] [Google Scholar]

35. Winzer K, Falconer C, Garber NC, Diggle SP, Camara M, Williams P. Лектины Pseudomonas aeruginosa PA-IL и PA-IIL контролируются с помощью определения кворума и RpoS. J Бактериол 2000; 182:6401–11. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

36. Wu AM, Wu JH, Singh T, Liu J-H, Tsai A-S, Gilboa-Garber N. Взаимодействие специфического для фукозы Pseudomonas aeruginosa лектин, PA-IIL, с гликоконъюгатами млекопитающих, несущими поливалентные гликотопы группы крови Льюиса и ABH. Биохимия 2006; 88: 1479–92. [PubMed] [Google Scholar]

37. Рамфал Р., Пайл М. Доказательства наличия муцинов и сиаловой кислоты в качестве рецепторов для Pseudomonas aeruginosa в нижних дыхательных путях. Заразить иммунитет 1983; 41: 339–44. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

38. Берк FM, Маккормак Ринди С., Специале П., Фостер Т.Дж. Варианты фибронектин-связывающего белка B в Золотистый стафилококк . БМС Микробиол 2010;10:160–74. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

39. Симерски Дж., Патти Дж.М., Карсон М., Хаус-Помпео К., Тил М., Мур Д., Джин Л., Шнидер А., Делукас Л.Дж., Хёк М., Нараяна С.В.Л. Структура коллагенсвязывающего домена адгезина Staphylococcus aureus . Нат Структур Биол 1997; 4: 833–8. [PubMed] [Google Scholar]

40. Макдевитт Д., Франсуа П., Водо П., Фостер Т.Дж. Идентификация лиганд-связывающего домена поверхностного рецептора фибриногена (фактор слипания) Золотистый стафилококк . Мол Микробиол 1995; 16: 895–907. [PubMed] [Google Scholar]

41. Эйдин Д.Н., Перкинс С., Франсуа П., Водо П., Хёк М., Фостер Т.Дж. Фактор слипания B (ClfB), новый поверхностный фибриноген-связывающий адгезин Staphylococcus aureus . Мол Микробиол 1998; 30: 245–57. [PubMed] [Google Scholar]

42. Даунер Р., Рош Ф., Парк П.В., Мехам Р.П., Фостер Т.Дж. Эластин-связывающий белок Staphylococcus aureus (EbpS) экспрессируется на поверхности клетки как интегральный мембранный белок, а не как белок, ассоциированный с клеточной стенкой. J Биол Хим 2002; 277: 243–50. [PubMed] [Академия Google]

43. О’Сигдха М., ван Шоотен С.Дж., Керриген С.В., Эмсли Дж., Сильверман Г.Дж., Кокс Д., Лентинг П.Дж., Фостер Т.Дж. Связывание белка А Staphylococcus aureus с доменом фактора фон Виллебранда А1 опосредуется консервативными областями связывания IgG. ФЕБС Дж 2006; 273:4831–41. [PubMed] [Google Scholar]

44. Davis SL, Gurusiddappa S, McCrea KW, Perkins S, Höök M. SdrG, фибриноген-связывающий бактериальный адгезин компонентов микробной поверхности, распознающий подсемейство молекул адгезивного матрикса из Staphylococcus epidermidis нацелен на сайт расщепления тромбином в цепи Bβ. J Биол Хим 2001; 276:27799–805. [PubMed] [Google Scholar]

45. Heilmann C, Thumm G, Chaatwal S, Hartlieb J, Uekötter A, Peters G. Идентификация и характеристика нового аутолизина (Aae) с адгезивными свойствами из Staphylococcus epidermidis . микробиология 2003; 149: 2769–78. [PubMed] [Google Scholar]

46. Heilmann C, Hussain M, Peters G, Gtz F. Доказательства аутолизин-опосредованного первичного прикрепления Staphylococcus epidermidis на поверхность полистирола. Мол Микробиол 1997; 24:1013–24. [PubMed] [Google Scholar]

47. Парк П.В., Розенблюм Дж., Абрамс В.Р., Розенблюм Дж., Мехэм Р.П. Молекулярное клонирование и экспрессия гена эластин-связывающего белка ( ebpS ) в Staphylococcus aureus . J Биол Хим 1996; 271:15803–9. [PubMed] [Google Scholar]

48. Уильямс Р.Дж., Хендерсон Б., Шарп Л.Дж., Наир С.П. Идентификация фибронектин-связывающего белка из Эпидермальный стафилококк . Заразить иммунитет 2002; 70: 6805–10. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

49. Крогфельт К.А., Бергманс Х., Клемм П. Прямые доказательства того, что белок FimH является маннозоспецифическим адгезином фимбрий Escherichia coli типа 1. Заразить иммунитет 1990; 58:1995–8. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

50. Korea C-G, Ghigo J-M, Beloin C. Сладкая связь: решение загадки множественных сахаросвязывающих фимбриальных адгезинов в Кишечная палочка . Биоэссе 2011;33:300–11. [PubMed] [Google Scholar]

51. Moch T, Hoschützky H, Hacker J, Kröncke K-D, Jann K. Выделение и характеристика а-сиалил-, 8-2,3-галактозил-специфического адгезина из фибрбриированного Escherichia coli . Proc Natl Acad Sci USA 1987; 84: 3462–6. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

52. Фарфан М.Дж., Кантеро Л., Видал Р., Боткин Д.Дж., Торрес А.Г. Длинные полярные фимбрии энтерогеморрагической Escherichia coli O157:H7 связывается с белками внеклеточного матрикса. Заразить иммунитет 2011;79:3744–50. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

53. Роча СПД, Пелайо Дж.С., Элиас В.П. Бахромки уропатогенного Proteus mirabilis . ФЭМС Иммунол Мед Микробиол 2007; 51:1–7. [PubMed] [Google Scholar]

54. Lee KK, Harrison BA, Latta R, Altman E. Связывание неагглютинирующих фимбрий Proteus mirabilis с асиалогликолипидами ганглио-серии и лактозилцерамидом. Can J Microbiol 2001;46:961–6. [PubMed] [Google Scholar]

55. Альтман Э., Харрисон Б.А., Латта Р.К., Ли К.К., Келли Дж.Ф., Тибо П. Опосредованное галектином-3 прилипание Proteus mirabilis к клеткам почек собак Мадин-Дарби. Биохим Клеточная Биол 2001; 79: 783–8. [PubMed] [Google Scholar]

56. Массад Г., Бахрани Ф.К., Мобли Х.Л. Proteus mirabilis фимбрии: идентификация, изоляция и характеристика новых фимбрий при температуре окружающей среды. Заразить иммунитет 1994;62:1989–94. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

57. Rozdzinski E, Marre R, Susa M, Worth R, Muscholl-Silberhorn A. Адгезия Enterococcus faecalis , опосредованная агрегацией вещества, к иммобилизованным белкам внеклеточного матрикса. Микроб Патог 2001; 30: 211–20. [PubMed] [Google Scholar]

58. Старый округ Колумбия, Адегбола РА. Новый устойчивый к маннозе гемагглютинин Klebsiella . J Appl Бактериол 1983; 55: 165–72. [PubMed] [Google Scholar]

Slough: что это значит и как им можно управлять :: Cambridge Media Journals

Реферат

Целью данной статьи является обзор образования шелушения на раневом ложе. Также будет изучено влияние шелушения на заживление ран. Существует несколько продуктов для промывания ран, которые можно использовать для безопасного удаления некроза, и несколько различных методов санации, включая аутолитическую, консервативную острую, хирургическую, ультразвуковую, гидрохирургическую и механическую, а также несколько методов лечения, которые можно использовать, в том числе осмотическую. , биологические, ферментативные повязки и подушечки из моноволокна. Эти различные методы будут описаны.

Исходная информация

Отслоение является обычным признаком хронических ран, хотя число ран, содержащих отторжение, еще не описано в литературе 1 . В определенных обстоятельствах, таких как грибковые заболевания злокачественных ран, лечение ран обычно паллиативное с мерами комфорта. И наоборот, если целью ухода является заживление раны, удаление некроза является жизненно важным компонентом подготовки раневого ложа 2 .

По существу, острые раны проходят упорядоченную последовательность заживления ран, которая включает гемостаз, воспаление, заживление и ремоделирование рубцовой ткани. Каждая фаза перекрывает и направляет следующую фазу заживления раны 2,3 . Происходит контролируемое высвобождение факторов роста, цитокинов и протеаз, которые контролируют миграцию, дифференцировку и пролиферацию клеток 1 . Однако некоторые раны не развиваются по прогнозируемой траектории заживления ран, становясь хроническими ранами. Они имеют тенденцию оставаться в воспалительной фазе заживления ран 3 . Это может быть результатом инфекции или повторяющейся ишемии и реперфузионного повреждения, что, в свою очередь, приводит к длительному воспалению 4 . Это приводит к высокому уровню матриксных металлопротеаз (ММР), уменьшая количество продуцируемых факторов роста, что приводит к клеточному старению. Раневой экссудат становится токсичным для внеклеточного матрикса. Это продолжительное воспаление увеличивает фагоцитоз и апоптоз, что потенциально увеличивает наличие шелушения на раневом ложе 4-6 . Типичными примерами хронических ран являются пролежни, венозные язвы ног и диабетические язвы стопы 1 .

Слизь представляет собой побочный продукт воспалительной фазы заживления ран, состоящий из фибрина, лейкоцитов, мертвых и живых клеток, микроорганизмов и белкового материала 1 . Внешний вид струпа обычно представляет собой бледно-желтую вязкую фибринозную ткань, которая может варьироваться от желтого до желтовато-коричневого цвета, обычно, но не всегда, покрывая все дно раны. Он может появляться на участках раневого ложа и, как правило, либо свободно прикрепляется к поверхности раны, либо прочно прикрепляется 1,7–9 . Слизь привлекает бактерии к поверхности раны, что приводит к снижению уровня воспаления. Лейкоциты и плазма проникают в раневое ложе, вызывая отек вокруг раны, повышение уровня экссудата и ускорение клеточной активности 7 . Биопленки также присутствуют в большинстве хронических ран, способствуя замедлению заживления ран 10,11 . Percival и Suleman постулируют, что существует прямая связь между шелушением и образованием биопленок на раневом ложе 1 .

Отслоение как препятствие для заживления ран

Надлежащее и безопасное удаление отслоек является жизненно важным компонентом заживления ран 12 . Слизь на раневом ложе не только затрудняет для клиницистов точную оценку раневого ложа, но и способствует замедлению заживления раны. Наличие шлака также 1,13 :

  • Продлевает воспалительную реакцию, что приводит к высокому уровню продукции протеаз и провоспалительных цитокинов.
  • Обеспечивает очаг инфекции.
  • Имитирует/скрывает инфекцию.
  • Привлекает бактерии к ране.
  • Усиливает запах и выделение экссудата.
  • Предотвращает прогрессирование раны в процессе заживления.

Удаление шелушения в сравнении с санацией

В литературе существуют разногласия относительно безопасного удаления омертвевших тканей с помощью стратегии удаления шелушения или санации. Было высказано предположение, что нет никакой разницы между любым методом 14 . Некротическая ткань связана с гибелью клеток в результате травмы, инфекции и/или основного патологического процесса. Классически некротическая ткань имеет черный цвет; однако он также может быть коричневым или серым и обычно сухим, хотя это может меняться в зависимости от увлажнения. Некротическая ткань либо плотно прилегает, либо отделяется от краев раны 9 . Слау считается частью воспалительного процесса, состоящего из фибрина, лейкоцитов, бактерий и дебриса, а также мертвых тканей и другого белкового материала. Это клеточный мусор, образовавшийся в результате процесса воспаления 7 . В отличие от некротических тканей, целью ухода за рыхлыми тканями обычно является их удаление. Некротическая ткань не должна удаляться при наличии нелеченого заболевания артерий, гангрены, стабильного струпа на пятках (если нет адекватной перфузии тканей), грибковых или изъязвленных опухолей и ран с фоновым воспалительным процессом, таких как гангренозная пиодермия 15 . Поскольку некротическая ткань представляет собой самостоятельную единицу, в данной статье внимание будет сосредоточено исключительно на влиянии шелушения на раневое ложе и способах удаления.

Естественное шелушение – это эндогенное действие ферментов, вырабатываемых лейкоцитами; по сути, они размягчают и разжижают омертвевшую ткань — это известно как аутолиз. Вспомогательное удаление шелушения происходит, когда собственные естественные аутолитические процессы организма не в состоянии справиться с количеством поврежденных тканей. Для облегчения автолиза используется ряд различных методов 7 . Удаление шелухи считается альтернативой санации с меньшим риском; этот метод включает использование средств для очистки раны и средств по уходу за раной, тогда как санация обычно предназначена для некротических тканей. Выбранный метод зависит от комплексной оценки раны, включая клиническую необходимость, лежащие в основе сопутствующие заболевания, такие как нарушения свертываемости крови, и лежащую в основе патологию раны.

Тем не менее, существуют разногласия по поводу разницы между удалением шелухи и санацией, поскольку оба термина используются в литературе взаимозаменяемо, вызывая некоторую путаницу 1 . На конференции Европейской ассоциации лечения ран (EWMA) в Лондоне в 2015 году состоялись дебаты, чтобы определить, есть ли разница. Дебаты проводились тремя ведущими медсестрами по жизнеспособности тканей и спонсировались Urgo Medical 14 . Ключевые пункты, которые вышли из дебатов, были следующими:

  • Создание новой категории рискует ввести медсестер в заблуждение.
  • Дезинфекция является частью санации.
  • Требуется клиническое образование – оно должно быть связано с оценкой пациента и являться наиболее подходящим методом для использования.
  • Клиницисты должны уметь оценивать и различать слущивание и некротическую ткань.

Соображения перед хирургической обработкой и клинические проблемы

Слизь присутствует в подавляющем большинстве хронических ран. Рецидив слущивания является частым явлением после хирургической обработки/удаления слущивания, поэтому необходимо продолжать удаление слущивания 1 . Не существует единого метода, способного удалить всю омертвевшую ткань. Вместо этого данные свидетельствуют о том, что требуется комбинация методов 7 .

Перед хирургической обработкой процедура должна быть полностью объяснена пациенту и получено согласие. Выбранный метод будет зависеть от ряда факторов, включая, но не ограничиваясь: лежащую в основе патологию раны, сопутствующие заболевания, потенциальный риск кровотечения, степень слущивающейся ткани, малую или большую площадь, уровень боли, которую испытывает пациент. , доступные ресурсы, уровень квалификации практикующего врача и будет ли процедура выполняться в больнице или в общественных условиях 15,16 . Установив, что удаление некроза жизненно важно для заживления раны, клиницист должен определить, какой подход лучше всего использовать.

На рынке также имеется несколько продуктов для очистки ран, поэтому важно выбрать наиболее подходящий. Некоторые из них содержат поверхностно-активные вещества и антимикробные агенты, в то время как другие являются сверхокисленными, содержащими либо низкие уровни хлорноватистой кислоты, либо гипохлорита натрия. Средства для очистки ран помогают ослабить омертвевшие ткани и либо предотвратить прикрепление биопленки, либо разрушить биопленку 17 . Очищение раны является жизненно важным компонентом подготовки раневого ложа.

Методы удаления шелушения / санации

Аутолитическая санация: Селективная санация — это высвобождение собственных протеолитических ферментов и фагоцитов организма, которые разжижают и смягчают омертвевшую ткань 9 . Нежизнеспособная ткань избирательно разжижается, отделяется и переваривается эндогенными ферментами 9 . Повязки поддерживают аутолитическую обработку раны, создавая влажную среду в ране 1,16 . Выбор повязки зависит от всесторонней оценки раны и цели ухода. Клиницист должен иметь представление о свойствах выбранной повязки, показаниях к применению и противопоказаниях и всегда следовать инструкциям производителей. Имейте в виду, что некоторые пациенты имеют аллергию или чувствительность к определенным перевязочным материалам и что некоторые перевязочные материалы могут вызывать боль. Имея это в виду, важно по возможности привлечь пациента к выбору повязки.

В качестве ориентира, если на раневом ложе имеется сухой прилипший струп, выберите повязку, которая отводит влагу. Если рана слизистая и экссудативная, выберите впитывающую повязку, помня о том, что она должна впитывать достаточное количество экссудата, чтобы свести к минимуму риск мацерации вокруг раны. В качестве альтернативы может потребоваться увеличение частоты смены повязок 15,16 . В ранах, демонстрирующих признаки местной инфекции 17 , такие как эритема, локальное повышение температуры, отек, гнойные выделения, замедленное заживление раны, новые или усиление боли и/или усиление неприятного запаха 17 целесообразно использовать противомикробную повязку.

Аутолитическая санация считается безопасной, селективной и относительно безболезненной 16,18 ; однако этот метод может занять некоторое время, поскольку требуется несколько смен повязок. Аутолитическая санация не показана пациентам с ишемией конечностей или пальцев, когда целью лечения является сохранение раны сухой 15 , а также при клинически инфицированных или глубоких ранах 15,18 . Если рана клинически инфицирована, следует рассмотреть хирургическую обработку 16,18 .

Острая консервативная санация: Это селективное удаление нежизнеспособных тканей острыми инструментами, например, скальпелем, ножницами или кюреткой. Эта техника может выполняться у постели больного, в амбулаторных условиях или по месту жительства. Необходимо соблюдать осторожность, чтобы не повредить подлежащие ткани. Практикующий врач также должен знать о протезах под омертвевшими тканями 12 . Этот метод имеет такие же риски, что и хирургическая обработка; однако степень риска меньше 15 . Выполняйте эту процедуру только в том случае, если она входит в сферу вашей практики, вы обладаете достаточными навыками для выполнения этой процедуры и знаете, когда нужно остановиться 18 . Обеспечьте соблюдение асептики во время процедуры.

Хирургическая санация: Это неселективный метод санации из-за необходимости иметь четкие границы со здоровыми тканями 19 , и выполняется в операционной с использованием регионарной или общей анестезии хирургом, обычно из специальность пластический, сосудистый, травматолог или общий хирург 16 . Показан при ранах с обширным некрозом тканей или инфекцией. Если в учреждении нет необходимого персонала или срочного оборудования, для пациентов с сепсисом или некротизирующим фасциитом может потребоваться направление в больницу третичного уровня 18 .

Существуют дополнительные риски, связанные с анестезией. Например, следует соблюдать осторожность у пациентов с диабетом, заболеваниями артерий и нарушениями свертываемости крови 15 . Существует также повышенный риск кровотечения, боли и повреждения подлежащих структур. Тем не менее, этот метод является быстрым и эффективным методом санации 15 .

Ультразвуковая санация: Предлагается с помощью низкочастотного ультразвука (25–30 кГц), подаваемого через физиологический раствор или раствор для промывания ран. Есть два режима – контактный и бесконтактный. Контактный режим санирует рану, не повреждая здоровые ткани, оказывает бактерицидное действие, разрушает биопленки, стимулирует заживление раны. Бесконтактный режим оказывает бактерицидное действие только 20,21 . Этот тип хирургической обработки можно использовать для различных типов ран и тканей, включая раны диабетической стопы, венозные язвы нижних конечностей, раны, которые считаются непригодными для хирургического вмешательства, а также при обнажении сухожилий, соединительной ткани и кости 16,22 . Для этой процедуры требуется обученный персонал. Также необходимо носить защитную одежду из-за рисков, связанных с аэрозолем продуктов крови и микроорганизмов 23 . Первоначальная настройка машины и оборудования может быть дорогостоящей; наконечники не одноразовые и требуют стерилизации 20 .

Гидрохирургическая санация: Сочетает физическую и хирургическую санацию. Использование струи физиологического раствора под высоким давлением создает эффект Вентури — движение жидкости через суженное отверстие, что приводит к снижению давления и всасывающему эффекту — что позволяет удалять некротические ткани с помощью одноразового наконечника 1 . Однако, в отличие от ультразвуковой обработки, он не является селективным и поэтому удаляет здоровые и омертвевшие ткани. Как и в случае ультразвуковой обработки, оборудование может быть дорогостоящим, требует обученного персонала, а также существуют риски, связанные с аэрозолизацией, поэтому необходимо носить защитную одежду 19 .

Механическая санация: Традиционный метод влажных и сухих повязок больше не рекомендуется в качестве метода удаления шелушения. Это включает в себя наложение марли на рану от влажной до сухой. Верхний слой прилегает к ложу раны; однако при удалении удаляются как здоровые, так и нездоровые ткани. Это также может быть болезненным и травмирующим для пациента 19,23 . Этот метод может вызвать длительное воспаление, повредить здоровые ткани и потенциально увеличить риск инфекции, что приведет к замедлению заживления ран 15 .

Осмотическая терапия (мед): Используемый тип меда специально изготовлен для использования при лечении ран. Он получен из отобранных видов растений Leptospermum или Eucalyptus marginata и Santalum и зарегистрирован Управлением терапевтических товаров для использования при открытых ранах 24 . Мед вытягивает жидкость из окружающих тканей, чтобы ускорить аутолитическую санацию. рН раны снижается до 3,0–4,5. Это создает кислую среду, неблагоприятную для бактерий, особенно Pseudomonas aeruginosa или Staphylococcus aureus 16,24 . Побочным продуктом является выделение перекиси водорода или метилглиоксаля; это также поддерживает аутолитическую обработку раны 21 .

Биологическая (лаваль) терапия: Живые стерильные личинки, полученные из 9Виды 0391 Lucilia sericata вносят в раневое ложе либо в рассыпчатом виде, либо в виде сетчатых повязок. Личинки поедают омертвевшую ткань, выделяя антибактериальное соединение. Это снижает биологическую нагрузку и воспаление в ране 16,25 . Этот метод считается селективным, так как личинки не поедают здоровые ткани. Для достижения оптимальных результатов рану необходимо поддерживать во влажном состоянии, увлажняя наружную повязку не реже одного раза в день. По завершении обработки личинки должны быть помещены в двойные мешки и сожжены 19 .

Ферментативная терапия: Это повязки, полученные из протеолитических ферментов, экстрагированных из бычьей плазмы или поджелудочной железы, фруктов и растений, таких как папин или бромелаин из ананаса, или бактериальной коллагеназы, полученной из Clostridium histolyticum sp. Они рекомендуются при твердом сухом струпе, который может потребоваться надрезать скальпелем для проникновения фермента 16 . В настоящее время эти конкретные продукты недоступны на австралийском рынке 15 . Доступен ферментный альгиногель, альгинатный гель, содержащий встречающиеся в природе ферменты глюкозооксидазу (также обнаруженную в меде) и лактопероксидазу (содержащуюся в слезах, слизи и молоке млекопитающих), что оказывает антибактериальное действие 9,24 .

Терапия подушечкой из моноволокна: В этих повязках сторона, контактирующая с раной, ворсистая, состоящая из полиэфирных моноволокон (18 миллионов на 10×10 см). Тампон необходимо предварительно смочить раствором для промывания ран, затем аккуратно протереть поверхность раны круговыми движениями. Нежизнеспособная ткань удерживается в кольцах повязки, тем самым удаляя обломки 19 . Полезен при гнойных ранах и гиперкератозе 16 . Прокладки предназначены для одноразового использования; они не подлежат повторному использованию.

Заключение

Крайне важно, чтобы клиницисты могли различать некротические ткани и некротизированные ткани, поскольку лечение обоих типов тканей может быть различным. В отличие от рыхлой ткани, когда цель лечения обычно состоит в ее удалении, бывают случаи, когда некротическую ткань не следует удалять или удалять с осторожностью.

Слизь считается побочным продуктом воспалительной фазы заживления ран. Важным компонентом подготовки раневого ложа является удаление слущивания из раневого ложа. Слизь не только способствует замедлению заживления ран, но и препятствует точной оценке раны, а также может содержать биопленки. Не один метод подходит для всех ран. Как правило, требуются различные методы удаления. Решение о наилучшем подходе к удалению некроза зависит от тщательной оценки состояния пациента и раны. Слау имеет тенденцию рецидивировать, поэтому для постоянного удаления необходимо иметь постоянные стратегии. Удаление струпа является ключевым шагом в ускорении заживления раны. Клиницисту необходимо иметь полное представление о том, что такое шелушение, его влияние на заживление ран и различные подходы, которые можно предпринять.

Конфликт интересов

У автора нет конфликта интересов.

Финансирование

Авторы не получали финансирования для этого исследования.

Автор(ы)

Донна Энджел
RN, NP, BN, PGDip (Clin Spec), MSc (Nur)
Королевская больница Перта
Веллингтон-стрит, Перт, Вашингтон,
Электронная почта Donna. [email protected]

Ссылки
  1. Персиваль С., Сулеман Н. Слау и биопленка: удаление барьеров на пути заживления ран путем удаления шелушения. J Уход за ранами 2015; 24 (11): 498, 500–3, 6–10.
  2. Schultz G, Sibbald G, Flanga V, Ayello E, Dowsett C, Harding K, et al. Подготовка раневого ложа: систематический подход к лечению ран. Wound Repair Regen 2003; 11 (Приложение 1): 1–28.
  3. Schultz G, Dowsett C. Новый взгляд на подготовку ложа раны. Wounds International 2012;3(1):27–9.
  4. Мусто Т. Понимание хронических ран: объединяющая гипотеза об их патогенезе и значении для терапии. Ам Дж. Сург 2004; 187 (5A): 655–705.
  5. Телегенхофф Д., Шрут Б. Механизмы клеточного старения при заживлении хронических ран. Cell Death Different 2005; 12: 695–8.
  6. Attinger C, Janis J, Steinberg J, Schwartz J, Al-Attar A, Couch K. Клинический подход к ранам: санация и подготовка раневого ложа, включая использование повязок и ранозаживляющих средств. Plastic Reconstruct Surg 2006; 117 (Приложение 7): 72S–109S.
  7. Милн Дж. Подготовка ложа раны: важность быстрого и эффективного удаления шелушения для ускорения заживления. Br J Nurs 2015; 24 (Sup 20): S52–S8.
  8. Грей Д., Уайт Р., Купер П. Прикладное лечение ран и использование континуума заживления ран на практике. Основы раны 2010; 5: 131–9.
  9. Уайт В., Азимус М. Оценка и лечение нежизнеспособных тканей. В: Суонсон Т., Асимус М., МакГиннес Б., редакторы. Лечение ран для продвинутого практикующего врача. Мельбурн: IP-коммуникации; 2014. с. 170–203.
  10. Джеймс Г., Своггер Э., Уолкотт Р., ДеЛэнси Пульчиник Э., Секор П., Сестрич Дж. и др. Биопленки в хронических ранах. Восстановление ран 2008; 16 (1): 37–44.
  11. Бьярншолт Б., Киркетерп-Мёллер К., Дженсен О., Мэдсен К., Фиппс Р., Крогфельт К. и др. Когда хронические раны не заживают: новая гипотеза. Wound Repair Regen 2008; 16 (1): 2–10.
  12. Ousey K, McIntosh C. Понимание подготовки раневого ложа и санации раны. Br J Community Nurs 2010; 15 (Suppl1): S22–8.
  13. Липер Д., Шульц Г., Карвилл К., Флетчер Дж., Суонсон Т., Дрейк Р. Расширение концепции ВРЕМЕНИ: чему мы научились за последние 10 лет? Международная рана J 2012; 9(Приложение, 2): 1–19.
  14. Коуэн Т. Есть ли разница между санацией и удалением шелухи? Бр Дж Нурс 2015;24(15):S18, S20.
  15. Хит К., Энджел Д., Кэмпбелл С., Джексон М., Кортис С., Легг А. и др. Лечение язв и ран. Мельбурн: Терапевтические рекомендации, ограниченные; 2019.
  16. Strohal R, Apelgvist J, et al. Документ EWMA: санация. J Wound Care 2013; 22 (Приложение 1): S1–S52.
  17. Международный институт раневых инфекций (IWII). Раневая инфекция в клинической практике. Лондон: Wounds International. 2016.
  18. Айелло Э., Каддиган Дж. Санация: контроль некротического/клеточного бремени. Adv Skin Wound Care 2004;17(2):66–75.
  19. Утечка К. Десять лучших советов по санации. Wounds International 2012;3(1):21–3.
  20. Бутчер Г.

    No related posts.

Добавить комментарий

Ваш адрес email не будет опубликован. Обязательные поля помечены *